二、非同位素原位杂交组化与免疫组化联合法

非同位素标记物很多例如：生物素（biotin），地高辛（Digoxigenin），汞（mercury），溴（bromine）和碱性磷酸酶等，其中目前应用最多的是生物素和地高辛。将此法与免疫组化PAP法或ABC法联合使用，能成功地显示一些神经肽mRNA和神经肽的共存与共同分布。向正华等发现碱性磷酸酶抗地高辛抗体是经木瓜蛋白酶处理的，只有抗体的Fab段没有Fc段，而免疫细胞化学（Immunocytochemistry,ICC）所应用的抗体既有Fab段，又有Fc段。由于抗体的这一特性可在ISHH和ICC抗体孵育时将检测核酸的抗地高辛抗体Fab段与检测蛋白、多肽的兔抗血清混合在一起，一同孵育切片，这样可明显缩短ISHH和ICC结合法的实验周期，同时还可以减少实验过程中对ICC检测的蛋白、多肽的损害，使结合法易成功。为什么两种抗体可同时混合孵育切片，这是因为抗地高辛抗体只有Fab段，而没有Fc段。我们知道抗体的抗原决定簇在Fc段，因此第二抗体与第一抗体的结合是第二抗体的Fab与第一抗体的Fc，所以第一抗体如果只有Fab段没有Fc段，那么第二抗体就无法与一抗结合。因此实验中将二种抗体混合孵育切片而不会产生交叉结合。以下为此法的原理图（图20-5）。 [img]https://baike.zhuayao.net/Uploads/zyzy/lilunshuji/shiyongmianyixibaoyuhesuan/shiyongmianyixibaoyuhesuan107.jpg[alt]原位杂交细胞化学与免疫细胞化学结合法 [/alt][/img] 图20-5　原位杂交细胞化学与免疫细胞化学结合法 此种ISHH与ICC联合法稳定，实验周期短，蓝色与棕色反差强，是目前较好的ISHH与ICC结合法。详细程序如下： （1）将切片漂浮于能经受高压灭菌的器皿中。0.1mol/l PBS pH7.2冲洗3×5min。 （2）0.1mol/L甘氨酸PBS冲洗5min。 （3）0.4% Triton X-100 PBS 15min。 （4）1μg./ml蛋白酶K（0.1mol/l Tris –HCl pH8.0, 50mmol/L EDTA 配），37℃保温30min。 （5）4%多聚甲醛PBs 5min。 （6）PBS冲洗2×min。 （7）0.25%乙酸酐（0.1mol/L三乙醇胺配）10min。 （8）2×SSC冲洗10min。 （9）将切片用灭菌吸水纸吸干，然后入杂交液。核酸探针浓度为0.25～0.5μg./ml。每一正常成年大鼠脑冠状切片15μl杂交液足够。43℃保温12～16h。 （10）4×SSc 37℃冲洗30min。 （11）2×SSC（含RNasea 20μg/ml）37℃保温30min。 （12）1×SSC和0.5×SSc 37℃分别冲洗30min。 （13）0.05mol/l PBS冲洗3×5min。 （14）0.5%H[XB]2[/XB]O[XB]2[/XB]PBS室温20min。 （15）0.05mol/l PBS 冲洗2×5min。 （16）碱性磷酸酶标记抗地高辛抗体（Fab）与抗蛋白或多肽等抗体混合液，前者一般1：1000稀释，后者则因抗体而异。稀释液：1%BSA，0.4%Triton X-100 ,0.05mol/L PBSpH7.2，4℃孵育24h。 （17）0.05mol/l PBS冲洗4×5min。 （18）二抗（1：100～1：200）37℃保温1h。 （19）0.05mol/l PBS冲洗3×5min。 （20）PAP（1：200～1：400）37℃保温1h。 （21）0.05mol/l PBS冲洗3×5min。 （22）DAB显色液（0.05%DAB + 0.03% H[XB]2[/XB]O[XB]2[/XB],0.05mol/L PBS pH7.2配）显色5～10min。 （23）0.05mol/l PBS冲洗3×5min。 （24）TSM，冲洗2×5min（TSM[XB]1[/XB]：0.1mol/l Tris – HCl pH8.0,0.1mol/LNaCl,0.01mol/L MgCl[XB]2[/XB]）. （25）硝基四氮唑蓝（400μg/ml）和5-溴-4-3-吲哚磷酸（200μg/ml）混合液（TSM[XB]2[/XB]配显色混合液）显色1～3h，避光。 （26）20mmol/l EDTA终止显色。 （27）将切片贴于涂有铬矾明胶的载片上，空气干燥。 （28）梯度酒精脱水，透明、封片。 结果：ISHH阳性细胞的胞质呈紫蓝色，胞核不着色，示该细胞含XmRNA。ICC阳性细胞的胞质呈棕色，胞核不着色示该细胞含X多肽。双标记细胞的胞质为蓝棕混合色，示多肽与mR－NA共存于该细胞内。